Invoering

De bladcharme, het patroon van bladvariatie en textuur, en zijn tolerantie voor beperkt zonlicht maken de Alocasia's tot een van de meest populaire planten onder landschapstuinders en plantenverzamelaars.

Alocasia omvat ongeveer 100 soorten en is een morfologisch diverse geslachten in de familie Arecaceae. De leden worden veelvuldig gebruikt voor verschillende doeleinden. zijn bladeren, wortels, en stengel worden op sommige plaatsen voor eetbare doeleinden gebruikt, en de plant Giant Taro heeft veel geneeskrachtige eigenschappen, waaronder antidiarree, antischimmel, en ontstekingsremmende eigenschappen.

De geneeskrachtige eigenschappen en de schoonheid van de plant maken hem zeer gewild bij de mensen. De torenhoge vraag naar deze planten in de commerciële ruimte heeft wetenschappers ertoe aangezet om met een beter alternatief te komen om aan de marktvraag te voldoen. En, weefselkweekhulpmiddelen zijn bewezen uitstekende technieken om aan alle bovengenoemde doeleinden te voldoen.

Dit artikel geeft een beschrijving van de Alocasia geslachten en haar leden en verder, het neemt je mee naar de weefselkweek van deze plant en zijn procedure.

Over Plant

Alocasia is een geslacht met knolachtige meerjarige bloeiende plantensoorten met brede bladeren en wortelstokken. De planten worden meestal 2-6 'lang.

De bladeren van planten zijn langgesteeld, pijlvormige tot hartvormige die zijn versierd en kleurrijk versierd in verschillende maten, van 8 "tot 36" lang, afhankelijk van de soort. De planten worden gewoonlijk olifantenoren genoemd vanwege de gelijkenis van hun bladeren met grote olifantenoren.

Ze zijn inheems in tropische regenwouden, secundaire vegetatieplaatsen, en langs beken of moerassige plaatsen uit India, Zuid-Oost Azië, en Zuid-China via de eilanden in de Stille Zuidzee (met name de Filippijnen, Caroline-eilanden, en Indonesië) naar Oost-Australië.

Alocasia is het toppunt van mode voor tuiniers, culturisten, en plantenverzamelaars al meer dan 150 jaar. Deze planten worden op grote schaal verzameld en verkocht om aan commerciële schaal te voldoen.

Het bestaan ​​van verschillende soorten van de geslachten is bedreigd als gevolg van voortdurende verzameling en vernietiging van habitats. De druk om deze planten te beschermen kan worden verlicht door gebruik te maken van in vitro microvermeerderingstechnieken.

Weefselkweek van Alocasia

Weefselkweek is een essentieel biotechnologisch hulpmiddel geweest in plantenlaboratoria vanwege het grote potentieel voor de vermeerdering van hoogwaardige medicinale planten, productie van hoogwaardige natuurlijke producten, en snelle en massaproductie van planten.

Het is het beste alternatief voor de productie van medicinaal belangrijke plantmetabolieten, snelle vermenigvuldiging van bedreigde of zeldzame soorten, productie van ziektevrije planten, en plant-genoom transformatie.

Veel bedrijven hebben sinds 1974 de shoot tip-cultuurtechniek gebruikt om veel ziektevrije klonen van aroids te produceren (Hartman).

Hier, een procedure voor weefselkweek Alocasia longiloba met behulp van zaden is behandeld, die is ontleend aan de studie van Abdulhafiz, F., Mohammed, EEN., Kajat, F., Zakaria, S., Hamza, Z., Reddy Pamur, R., Hamza Z., Reduan, M.F.H. (2020). Micropropagatie van Alocasia longiloba Miq en vergelijkende antioxiderende eigenschappen van ethanolische extracten van de in het veld gekweekte plant, In vitro gepropageerd en in vitro afgeleid eelt. Planten, 9(7), 816. doi:10.3390/planten9070816

Procedure

• Plantmateriaal en zaadvoorbereiding:
• Verzamel de vruchten van A.longoliba en was ze onder stromend water, gevolgd door spoelen in steriel gedestilleerd water om het stof volledig te verwijderen. Vervolgens, scheid de zaden zorgvuldig met de hand en droog ze gedurende twee weken bij kamertemperatuur.
• Zaadlevensvatbaarheidstest:

• Imbibe een paar (100 of meer) zaden in steriel gedestilleerd water gedurende 18 uur bij 25 ± 2 ° C om het tegument te verzachten en de enzymsystemen te activeren.
• Dompel de zaden onder in 1% tetrazoliumoplossing (pH 7,0 ± 2) en incubeer gedurende 6 uur bij 45 °C in de donkere toestand.
• Aan het einde van de incubatieperiode, was de zaden met steriel gedestilleerd water en observeer onder een microscoop voor de verandering in de kleur. Vervolgens, bereken het levensvatbaarheidspercentage als het aantal gekleurde embryo's/totaal aantal. van embryo's vermenigvuldigd met 100.

• Zaadoppervlak sterilisatie:

• Was de gedroogde zaden van A. longiloba onder stromend kraanwater gedurende 30 min.
• Oppervlak steriliseer de zaden met een concentratie van 40% Clorox (natriumhypochloriet 5,25%) met een paar druppels tween-20.
• Schud de zaden op een rondschudapparaat bij 80 rpm gedurende 20 minuten.
• Was de gesteriliseerde zaden met steriel gedestilleerd water om een ​​spoor van Clorox te verwijderen en dep vervolgens droog op het gesteriliseerde Whatman-filteronderzoek (90 mm).

• Voorkiembehandeling:

Om de kiemrust te doorbreken en de ontkieming van zaden te maximaliseren, volg de procedure om zaden te behandelen:

• Verticuteer de zaden met 30% zwavelzuur (H2SO4) gedurende 15 minuten en spoel vervolgens gedurende 10 minuten in gedestilleerd water om het spoor van zure oplossing te verwijderen.
• Oppervlaktesteriliseer ze met 40% Clorox gedurende 20 minuten en was vervolgens drie keer met steriel gedestilleerd water gedurende 1 minuut.
• Kweek de zaden op een medium bestaande uit MS-medium, aangevuld met 30 g L−1 sucrose, 2,78 g L−1 Gelrite zonder plantengroeiregulator.
• Stel de pH in op 5,7 ± 0,2 voorafgaand aan het toevoegen van agar en vervolgens geautoclaveerd bij 121 ° C bij 103 kPa gedurende 20 minuten.
• Incubeer de culturen bij 25 ± 2 °C met een fotoperiode van 16 uur die wordt geleverd door koele witte tl-verlichting.

• In vitro scheutinductie en vermenigvuldiging:

• Gebruik de vier weken oude gekweekte in vitro zaden in deze fase.
• Verwijder de zaadlob, hypocotyl, en de wortel voorzichtig.
• Inoculeer ongeveer 2-3 cm scheutpunt in MS-medium aangevuld met cytokinine 6-benzylaminopurine (BAP), bij 3 mg L-1.

• Voor callusinductie:

• Behandel de zaden gedurende 15 minuten met 30% zwavelzuur, gevolgd door oppervlaktesterilisatie met 40% Clorox gedurende 20 minuten.
• Was vervolgens de explantaten met steriel gedestilleerd water om het spoor van Clorox te verwijderen.
• Inoculeer de gedesinfecteerde zaden aseptisch in een pot met ongeveer 25 ml medium (MS-medium aangevuld met 3 mg L−1 IAA) voor callusinductie.
• Incubeer de culturen bij 25 ± 2 °C onder koel tl-licht met een licht/donker-cyclus van 16/8 uur.

• Voor in vitro rooten:

• Kweek de geïsoleerde scheuten (2-3 cm) van meerdere scheutculturen in glazen potten met 20 ml MS-medium aangevuld met indol-3-azijnzuur bij 0,5 mg L-1, aangevuld met 30 g L−1 sucrose en 8 g L−1 agar onder 16/8 uur licht/donker fotoperiode.

• Voor acclimatisatie:

• Na 4 weken, Haal de goed gegroeide gewortelde plantjes (8-9 cm hoog) voorzichtig uit de kweekvaten en was ze grondig met stromend kraanwater.
• Vervolgens, spoel de wortels met water om het agarmedium te verwijderen.
• Bewaar de plantjes gedurende 5 dagen in de kweekruimte met een temperatuur van 25 ± 2 °C voordat ze naar de kas worden overgebracht.
• Na vijf dagen, plant de plantjes in een kleine plastic potmaat 20 × 15 cm met een bodemmedium met een combinatie van bovengrond en veenmos in een verhouding van 1:2.

Blijf uw plant in de gaten houden en registreer hun groei en merk eventuele negatieve veranderingen op om onmiddellijk actie te ondernemen voordat uw culturen volledig worden verwend.

En, als dit protocol voor u werkt, laat het ons weten via [email protected].

Voor alle weefselkweekvereisten, bezoek nu de PCT-winkel en ga aan de slag met uw weefselkweekprocessen.

En, als u suggesties en oplossingen nodig heeft voor uw weefselkweekproblemen, u kunt onze consultatiediensten gebruiken om rechtstreeks met onze wetenschappers te praten.